Вепрева Пустынь: cr2 — LiveJournal

Давным-давно я уже писал про Медведеву Пустынь. Сегодня продолжаем тему «звериных» монастырей и отправимся в Ярославскую область в Вепреву пустынь

 Вепрева Пустынь — одно из самых древнейших (Василий Вепрев, владевший этой местностью и получивший от нее прозвище, упоминается в договорной грамоте 1440г.) поселений Ярославской земли — расположено среди ростовских лесов и болот.

Благо петлять по топям и чащам не очень долго — свернув с трассы, минут через 15 мы на месте. Нас встречает полуразрушенный Успенский храм 1822 года. Построен храм на холме на месте трех церквей, образующих монастырь Вепрева Пустынь, из которых две сгорели, а третья заменена нынешним.

Монастырь существовал уже при царе И.Грозном «при которомъ построена (та) пустынь и дана имъ ево государская грамота». Как и Медведева Пустынь, монастырь был упразднён екатерининской реформой 1764 года

Как сообщает одна рукопись — эта местность названа от того, что ростовский князь С. Ю.Ворона убил вблизи озера огромного вепря. Жена  князя, княгиня Феодора, была похищена и увезена князем В.Ю.Шемякой. Княгиня Феодора поступила впоследствии в монашество и основала здесь монастырь, который вскоре сгорел, но был возобновлен 

Когда Успенская деревянная церковь сгорела со всей утварью, то среди пожарища была найдена под пеплом в целости, нисколько не поврежденная, восковая свеча, стоявшая до пожара перед местной иконой Успения Божией Матери 

До 30-х годов XX века эта свеча, вместе с иконой,поклониться которой стремилось множество паломников из разных мест, составляла предмет особого почитания верующих. Массовое паломничество привлекло внимание властей. Настоятель храма (Кавалеров Василий Иванович) в 1931 году репрессирован, а храм разграблен. Ныне местонахождение свечи неизвестно, а чудотворная икона в 2007г. найдена в Ростовском Петровском монастыре.

Храм стоит на горке, на которую мы и поднимемся

День поездки был пасмурным и дождливым, но погода никогда не останавливает меня в путешествиях. И вот, стоило мне подняться на гору к храму, как она озарилась солнцем, на 30 секунд пробившемся сквозь сплошные облака. Я сразу за камеру — чудесный свет!, жаль ток ракурс не самый, какой можно было желать снять при свете, но и на том спасибо. Солнце, кстати, в этот день больше не показывалось

Храм закрыт, но на двери координаты священника

За церковью расположена деревня Вепрева Пустынь. Сходим туда

Многие дома уже мертвы

Некоторые же, напротив, стильные и ухоженные

Прогуливаясь по деревне, мне, как и в Кузьминском, несколько раз предлагали купить дом и взять «трёх котят с матерью-кошкой в придачу», удивляясь, что я забыл в этой глуши. А в эту глушь хочется возвращаться снова и снова… 

Приехать бы сюда в тёплый день, посидеть на пригорке, погреться в лучах солнца и, слушая тишину, погрузиться в мысли….

На этом всё.

В качестве бонуса — самая «дорожная» песенка. Так бы ехал и ехал под неё

Ярославская область, Район Ростовский, Село Вепрева Пустынь

Карточка объекта ФИАС:
Код КЛАДР:
7601400003100
Код ФИАС:
a99667ef-b9f7-4ad5-a796-cdd271a65a77
Код ГАР:
1403600

Административный адрес: Ярославская область, Район Ростовский, Село Вепрева Пустынь
Сокращенный адрес: обл. Ярославская, р-н. Ростовский, с. Вепрева Пустынь

Муниципальный адрес: Ярославская область, Муниципальный район Ростовский, сельское поселение Петровское, Село Вепрева Пустынь
Сокращенный адрес: обл. Ярославская, м.р-н. Ростовский, с.п. Петровское, с. Вепрева Пустынь

Регион: 76 Ярославская обл
Город / Населенный пункт:
Ростовский
р-н, Вепрева Пустынь
с

ОКАТО: 78237820007
OKTMO: 78637441266
Реестр: 786374412660000000001
Код ИФНС: 7627

Вепрева Пустынь с включает в себя:
     
23
дома

Дома

д. 1
д. 2
д. 3
д. 4
д. 5
д. 6
д. 7
д. 8
д. 9
д. 11
д. 12
д. 13
д. 14
д. 15
д. 16
д. 17
д. 18
д. 19
д. 20
д. 21
д. 22
д. 23
д. 24

Генетическое разнообразие, примесь и анализ гомозиготных по происхождению (HBD) сегментов русского кабана

1. Гровс С.П., Грабб П. Евразийские свиные Sus и Babyrousa. В: Оливер WRL, редактор. Свиньи, пекари и бегемоты. План действий по статусу, обследованию и сохранению. Железа: МСОП. Таксономия копытных. Издательство Университета Джона Хопкинса; Балтимор, Мэриленд, США: 2011. с. 322. [Google Scholar]

2. Серванти С., Гайяр Дж.-М., Ронки Ф., Фокарди С., Баубет Э., Хименес О. Влияние лесозаготовительной тактики на демографическую тактику: последствия для управления дикой природой. Дж. Заявл. Экол. 2011;48:835–843. doi: 10.1111/j.1365-2664.2011.02017.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

3. Gamelon M., Gaillard J.-M., Servanty S., Gimenez O., Toïgo C., Baubet E., Klein F., Lebreton J.-D. Использование информации об улове для изучения альтернативных сценариев управления: структурированная модель живой массы дикого кабана. Дж. Заявл. Экол. 2012; 49: 833–841. doi: 10.1111/j.1365-2664.2012.02160.x. [CrossRef] [Google Scholar]

4. Giuffra E., Kijas J.M.H., Amarger V., Carlborg Ӧ., Jeon J.-T., Andersson L. Происхождение домашней свиньи: независимое приручение и последующая интрогрессия. Генетика. 2000; 154:1785–179.1. doi: 10.1093/genetics/154.4.1785. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Гроенен М.А. Анализ геномов свиней дает представление о демографии и эволюции свиней. Природа. 2012; 491:393–398. doi: 10.1038/nature11622. [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Данилкин А.А. Управление ресурсами диких кабанов и другие животные Африканская чума свиней. Научно-издательское товарищество КМК; Москва, Россия: 2020. с. 150. [Google Scholar]

7. Кульпин А.А. Особенности биотопического распределения и питания кабана ( Sus scrofa L.) на севере европейской части России. Бык. Нижегородский ун-т. Н.И. Лобачевский. 2008; 2:82–86. (на русском языке) [Google Scholar]

8. [(по состоянию на 1 августа 2021 г.)]. Режим доступа: http://www.ohotcontrol.ru/resource/number/

9. Данилкин А.А. О недопустимости тотальной депопуляции кабана ( Sus scrofa L.) в связи с африканской чумой свиней. Бык. Охота. науч. 2019;16:123–131. (In Russian) [Google Scholar]

10. Хедерзаде С., Куша С., Хуанг С.-П., Марков Н., Скандура М., Бабаев Э., Шпрем Н., Серёдкин И.В., Пол Л., Эсмализаде А. и др. Вариабельность материнского генома кабана ( Sus scrofa ) свидетельствует об уникальности восточно-кавказских и центрально-итальянских популяций. Экол. Эвол. 2019;9:9467–9478. doi: 10.1002/ece3.5415. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Рамайо Ю., Шемеретьева И.Н., Перес-Энсизо М. Разнообразие митохондриальной ДНК дикого кабана из Приморского края (восток России) Аним. Жене. 2011;42:96–99. doi: 10.1111/j.1365-2052.2010.02074.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Чой С.К., Ким К.С., Ранюк М., Бабаев Э., Волошина И., Баярлхагва Д., Чонг Дж.-Р., Исигуро Н., Ю Л. , Мин М.-С. и др. Общеазиатская филогеография диких кабанов ( Sus scrofa ) на основе митохондриальной ДНК и Y-хромосомы: пересмотр путей миграции диких кабанов в Азии. ПЛОС ОДИН. 2020;15:e0238049. doi: 10.1371/journal.pone.0238049. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Яколина Л., Брайкович В., Кану А., Шпрем Н., Кубрик-Цурик В., Фонтанези Л., Саарма У., Аполлонио М., Скандура М. Новые короткие тандемные повторы Y-хромосомы в Sus scrofa и их вариации в популяциях европейских диких кабанов и домашних свиней. Аним. Жене. 2016; 47: 682–690. дои: 10.1111/возраст.12483. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Гладырь Е.А., Эрнст Л.К., Костюнина О.В. Изучение генома Sus scrofa с использованием ДНК-маркеров. Сельскохозяйственная биол. 2009; 2:16–26. [Академия Google]

15. Коста В., Перес-Гонсалес Х., Сантос П., Фернандес-Лларио П., Карранса Х., Жолнаи А., Антон И., Бузго Х., Варга Г., Монтейро Н. и др. . Микросателлитные маркеры для идентификации и анализа происхождения европейского дикого кабана ( Sus scrofa ) BMC Res. Примечания. 2012;5:479. дои: 10.1186/1756-0500-5-479. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Чой С.К., Ли Дж.Э., Ким Ю.Дж., Мин М.С., Волошина И., Мысленков А., О Дж.Г., Ким Т.Х., Марков Н., Серёдкин И. и др. Генетическая структура кабана ( Sus scrofa ) популяции из Восточной Азии на основе анализа микросателлитных локусов. БМС Генет. 2014;15:85. дои: 10.1186/1471-2156-15-85. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Андерсон Д., Негиши Ю., Тома Р., Нагата Дж., Тамате Х., Канеко С. Надежные микросателлитные маркеры для гибридного анализа между одомашненными свиньи и кабаны: маркеры гибридизации свиней и кабанов. Жене. Ресурс. 2020; 1: 29–41. doi: 10.46265/genresj.BNHB8715. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

18. Фанг М., Ларсон Г., Соарес Рибейро Х., Андерссон Л. Контрастный способ эволюции локуса окраски шерсти у диких и домашних свиней. Генетика PLoS. 2009;5:e1000341. doi: 10.1371/journal.pgen.1000341. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Koutsogiannouli E.A., Moutou K.A., Sarafidou T., Stamatis C., Mamuris Z. Обнаружение гибридов между дикими кабанами ( Sus scrofa scrofa ) и домашних свиней ( Sus scrofa f. domestica) в Греции с использованием метода ПЦР-ПДРФ на мутациях рецептора меланокортина-1 (MC1R). Мамм. биол. 2010;75:69–73. doi: 10.1016/j.mambio.2008.08.001. [CrossRef] [Google Scholar]. , и другие. Полногеномные данные SNP раскрывают глобализацию одомашненных свиней. Жене. Сел. Эвол. 2017;49:71. doi: 10.1186/s12711-017-0345-y. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Ceballos F., Joshi P., Clark D., Ramsay M., Wilson J.F. Прогоны гомозиготности: окно в историю популяции и архитектуру признаков. Нац. Преподобный Жене. 2018;19: 220–234. doi: 10.1038/nrg.2017.109. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Ференчакович М., Зёлкнер Дж., Капш М., Цурик И. Полногеномное картирование и оценка инбридинговой депрессии признаков качества спермы в популяции крупного рогатого скота. Дж. Молочная наука. 2017; 100:4721–4730. doi: 10.3168/jds.2016-12164. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Ван С., Хейнс С., Барани Ф., Отт Дж. Полногеномное картирование аутозиготности в человеческих популяциях. Жене. Эпидемиол. 2009; 33: 172–180. doi: 10.1002/gepi.20344. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Gorssen W., Meyermans R., Buys N., Janssens S. Генотипы SNP раскрывают субструктуру породы, селекционные сигнатуры и высоко инбредные области у свиней пьетрен. Аним. Жене. 2020;51:32–42. doi: 10.1111/возраст.12888. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Boettcher P.J., Tixier-Boichard M., Toro M.A., Simianer H., Eding H., Gandini G., Joost S., Garcia D. , Колли Л., Аймоне-Марсан П. и др. Цели, критерии и методы использования молекулярно-генетических данных при установлении приоритетов сохранения генетических ресурсов животных. Аним. Жене. 2010;41:64–77. doi: 10.1111/j.1365-2052.2010.02050.x. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

26. Williams J.L., Hall S.J., Del Corvo M., Ballingall K.T., Colli L., Ajmone Marsan P., Biscarini F. Инбридинг и очистка на геномном уровне: Крупный рогатый скот Chillingham обнаруживает обширную, неслучайную гетерозиготность SNP. Аним. Жене. 2016;47:19–27. дои: 10.1111/возраст.12376. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Перес-Энсизо М., Бургос-Пас В., Соуза К.А., Мегенс Х.Дж., Рамайо-Калдас Ю., Мело М., Лемус-Флорес К., Каал Э. ., Сото Х.В., Мартинес Р. и др. Данные из: Колонизация свиней в Америке: история 60 000 SNP. Набор данных дриад. 2012 г.: 10.5061/dryad.t1r3d. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Яколина Л., Скандура М., Гёдблед Д.Дж., Александри П., Круйманс Р.П.М.А., Ларсон Г., Арчибальд А., Аполлонио М., Шук Л.Б., Гроенен М.А., и соавт. Данные из: Геномное разнообразие и дифференциация управляемой островной популяции диких кабанов. Набор данных дриад. : 2015. doi: 10.5061/dryad.8bf48. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Goedbloed D.J., Megens H.-J., van Hooft P., Herrero-Medrano J.M., Lutz W., Alexandri P., Crooijmans R.P.M.A., van Wieren S.E., Ydenberg R.C., Prins H.H.T., et al. Данные из: Полногеномный анализ однонуклеотидного полиморфизма показывает недавнюю генетическую интрогрессию домашних свиней в популяции диких кабанов Северо-Западной Европы. Набор данных дриад. 2012 г.: 10.5061/dryad.v6f1g. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

30. Ян Б., Цуй Л., Перес-Энсизо М., Траспов А., Кройманс Р.П.М.А., Зиновьева Н. , Шук Л.Б., Арчибальд А., Гатфайак К., Кнорр К. и др. Данные из: Данные SNP для всего генома раскрывают глобализацию домашних свиней. Набор данных дриад. : 2017. doi: 10.5061/dryad.30tk6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Fan J.B., Oliphant A., Shen R., Kermani B.G., Garcia F., Gunderson K.L., Hansen M., Steemers F., Butler S.L. , Делукас П. и др. Симпозиумы по количественной биологии в Колд-Спринг-Харбор. Том 68. Лабораторный пресс Колд-Спринг-Харбор; Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США: 2003 г. Высокопараллельное генотипирование SNP; стр. 69–78. [PubMed] [Google Scholar]

32. Purcell S., Neale B., Todd-Brown K., Thomas L., Ferreira M.A.R., Bender D., Maller J., Sklar P., de Bakker P.I.W., Daly M.J. , и другие. PLINK: набор инструментов для полногеномной ассоциации и анализа сцепления на основе популяции. Являюсь. Дж. Хам. Жене. 2007; 81: 559–575. дои: 10.1086/519795. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Цзоу Ф. , Ли С., Ноулз М.Р., Райт Ф.А. Количественная оценка структуры населения с использованием коррелированных SNP по основным компонентам усадки. Гум. здесь 2010;70:9–22. doi: 10.1159/000288706. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Райко Т., Ильин А., Кархунен Дж. Анализ главных компонент для разреженных многомерных данных. В: Исикава М., Доя К., Миямото Х., Ямакава Т., редакторы. Нейронная обработка информации. Спрингер; Берлин, Германия: 2008. стр. 566–575. [Google Scholar]

35. Синнок П. Эффект Валунда для двухлокусной модели. Являюсь. Нац. 1975; 109: 565–570. дои: 10.1086/283027. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

36. Кинан К., Макгиннити П., Кросс Т.Ф., Крозье В.В., Продёль П.А. DiveRsity: пакет R для оценки и исследования параметров популяционной генетики и связанных с ними ошибок. Методы Экол. Эвол. 2013; 4: 782–788. doi: 10.1111/2041-210X.12067. [CrossRef] [Google Scholar]

37. Александр Д.Х., Ланге К. Усовершенствования алгоритма ADMIXTURE для оценки индивидуального происхождения. БМК Биоинформ. 2011;12:246. дои: 10.1186/1471-2105-12-246. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Бертран А., Кадри Н.К., Флори Л., Готье М., Друэ Т. RZooRoH: пакет R для характеристики индивидуальной геномной аутозиготности и идентификации гомозиготных по происхождению сегментов. Методы Экол. Эвол. 2019;10:860–866. doi: 10.1111/2041-210X.13167. [CrossRef] [Google Scholar]

39. Друэ Т., Готье М. Модельный подход к характеристике индивидуального инбридинга как в глобальном, так и в локальном геномном масштабе. Мол. Экол. 2017;26:5820–5841. doi: 10.1111/mec.14324. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

40. Люткемейер Э.С., Содхи М., Шук Л.Б., Малхи Р.С. Геномный анализ выявил множественное происхождение азиатских свиней. Мол. Филогенет. Эвол. 2010;54:680–686. doi: 10.1016/j.ympev.2009.11.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Chen H., Huang M., Yang B., Wu Z., Deng Z., Hou Y., Ren J., Huang L. Интрогрессия восточных китайцев и Южно-китайские гаплотипы способствуют улучшению фертильности и иммунитета у современных европейских свиней. ГигаНаука. 2020;9:giaa014. дои: 10.1093/gigascience/giaa014. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Муньос М., Боззи Р., Гарсия-Каско Дж.Ю., Нуньес А., Рибани О., Франси Ф., Гарсия М., Шкрлеп Г. ., Скьяво С., Бово В.Дж. и др. Геномное разнообразие, неравновесие по сцеплению и сигнатуры селекции у европейских местных пород свиней оценивались с помощью чипа SNP высокой плотности. науч. Отчет 2019; 9:13546. doi: 10.1038/s41598-019-49830-6. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Яколина Л., Пертольди К., Амиллс М., Куша С., Мегенс Х.-Ю., Балтяну В.А., Бакан Ю., Кубрик -Чурик В., Оя Р., Саарма У. и др. Очаги недавней гибридизации свиней и диких кабанов в Европе. науч. Отчет 2018; 8:17372. дои: 10.1038/s41598-018-35865-8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. Qin M., Li C., Li Z., Chen W., Zeng Y. Генетическое разнообразие и по-разному выбранные регионы между шаньдунскими аборигенными породами свиней и Западные породы свиней. Передний. Жене. 2020;10:1351. doi: 10.3389/fgene.2019.01351. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Xiao Q., Zhang Z., Sun H., Wang Q., Pan Y. Pudong Белая свинья: уникальный генетический ресурс, раскрытый по данным секвенирования . Животное. 2017;11:1117–1124. дои: 10.1017/S1751731116002494. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

46. Санчес-Монтес Г., Ариньо А.Х., Визманос Дж.Л., Ван Дж., Мартинес-Солано О.И. Влияние размера выборки и полных сибсов на характеристику генетического разнообразия: тематическое исследование трех синтопических иберийских амфибий, размножающихся в пруду. Дж. Херед. 2017; 108: 535–543. doi: 10.1093/jhered/esx038. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Манунза А., Амиллс М., Ноче А., Кабрера Б., Зиди А., Эгбалсайед С., де Альборнос Э.С., Портелл М., Меркаде А., Санчес А. и др. Румынские дикие кабаны и свиньи породы мангалица имеют европейское происхождение и имеют генетические признаки, совместимые с прошлыми узкими местами в популяции. науч. 2016 г.; 6:29913. doi: 10.1038/srep29913. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Hu C., Pan T., Wu Y., Zhang C., Chen W., Chang Q. Пространственная генетическая структура и историческая демография Востока Азиатский кабан. Аним. Жене. 2020; 51: 557–567. doi: 10.1111/возраст.12955. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Дзялюк А., Застемповска Е., Скужевски Р., Тваружек М., Граевски Ю. Большой вклад домашних свиней в местный генофонд свободноживущих европейских диких кабанов: Пример из Польши. Мамм. Рез. 2018;63:65–71. doi: 10.1007/s13364-017-0331-3. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]

50. Шпрем Н., Салайпал К., Сафнер Т., Джикич Д., Юрич Й., Цурик И., Чикич М., Кубрик-Цурик В. Генетический анализ гибридизации между одомашненными исчезающими породами свиней и диким кабаном. Livest. науч. 2014; 162:1–4. doi: 10.1016/j.livsci.2013.12.010. [CrossRef] [Google Scholar]

51. Goedbloed D.J., Megens H., Van Hooft P., Herrero-Medrano J. M., Lutz W., Alexandri P., Crooijmans R.P.M.A., Groenen M., Van Wieren S.E., Ydenberg R.C., и другие. Полногеномный анализ однонуклеотидного полиморфизма показывает недавнюю генетическую интрогрессию домашних свиней в популяции диких кабанов Северо-Западной Европы. Мол. Экол. 2013; 22: 856–866. дои: 10.1111/j.1365-294Х.2012.05670.х. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Бакоев С., Колосов А., Бакоев Ф., Костюнина О., Бакоев Н., Романец Т., Кошкина О., Гетманцева Л. Анализ гомозиготных -Породные (HBD) сегменты для чистопородных и помесных свиней в России. Жизнь. 2021;11:861. doi: 10.3390/life11080861. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Bosse M., Megens H.J., Madsen O., Paudel Y., Frantz L.A., Schook L.B., Crooijmans R.P., Groenen M.A. Геном свиньи: следствие демографии и ландшафта рекомбинации. Генетика PLoS. 2012;8:e1003100. doi: 10.1371/journal.pgen.1003100. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Россия обещает активизировать борьбу с АЧС

Тяжесть вспышек и нарастание темпов заболевания в России были в центре внимания специальной телеконференции на прошлой неделе под председательством министра сельского хозяйства Николая Федорова.

Открывая встречу, Николай Федоров сказал, что ситуация с африканской чумой свиней вызывает большую тревогу.

«Прошу всех мобилизовать силы на борьбу с инфекцией, наносящей серьезный ущерб отечественному свиноводству», — сказал он.

Анализируя очаги по регионам, он сообщил, что по данным Департамента ветеринарии с начала 2012 года зарегистрировано 57 очагов АЧС в семи регионах страны: 23 — в Краснодарском крае, 19 — в Тверской области, 11 – в Волгоградской области, а также единичные случаи в Республике Карелия и Калмыкии, Ростовской и Ярославской областях.

С 19 июня по 8 сентября Федоров сообщил, что ситуация с распространением АЧС значительно ухудшилась.

За это время было 50 случаев в пяти регионах. В Краснодарском крае было 20 случаев, в Тверской области — 19, в Волгоградской области — девять и по одному в Ростовской и Ярославской областях.

Из этих случаев АЧС была ликвидирована в двух небольших хозяйствах, осталось 48 очагов инфекции.

На совещании также были заслушаны основные причины продолжающегося распространения африканской чумы свиней.

Несмотря на запрет, частные приусадебные хозяйства и мелкие фермерские хозяйства продолжают откармливать свиней необработанными отходами, содержащими сырые продукты убойных свиней и кабанов.

Министр сельского хозяйства назвал заметным фактором риска то, что собственники и руководители предприятий до сих пор недооценивают опасность АЧС и продолжают действовать в нарушение нормативов, установленных в производственных биозащитных зонах.

Министр поинтересовался, какие меры принимаются областными властями для противодействия правонарушениям, и призвал руководителей сельхозорганизаций заняться решением проблемы.

В Краснодарском крае на окраинах очага инфекции и по периметру первой и второй зон, находящихся под угрозой по заболеванию, установлены полностью оборудованные охранно-карантинные пункты, запрещен перегон свиней а также перемещение продуктов животного происхождения.

Политика тотальной ликвидации в регионе АЧС привела к уничтожению около 160 000 свиней.

В настоящее время область находится на карантине до 15 октября. Карантин ввели в середине августа.

Аналогичные меры приняты в Тверской, Волгоградской, Ростовской и Ярославской областях.

Николай Федоров порекомендовал изучить опыт Краснодарского края, где были наказаны хозяйства и мелкие собственники, нарушившие анти-АЧС.

«Это пример государственного подхода, когда проблема приняла опасный оборот. Меры приняты, но они оказались эффективными с точки зрения защиты населения», — сказал он.

Глава Россельхознадзора Сергей Данкверт заявил, что распространение инфекции зависит от своевременных действий властей.

Есть убеждение, что ветеринарным службам региона необходимо тесно сотрудничать с хозяйствами, помогать в определении численности кабанов в каждом районе.

Николай Федоров подытожил: «Еще раз обращаю внимание руководителей всех уровней на то, что наша задача не из легких.